前方高能!單細(xì)胞測(cè)序?qū)嶒?yàn)人員請(qǐng)迅速集合!迅速集合!
上回說(shuō)到,走在生命科學(xué)研究前沿的急先鋒們,已經(jīng)了解了單細(xì)胞測(cè)序在各自研究方向上的應(yīng)用與價(jià)值,正摩拳擦掌準(zhǔn)備大干一番,卻遇到了重重障礙。今天,我們就來(lái)聊一聊單細(xì)胞測(cè)序第一個(gè)“攔路虎”----單細(xì)胞消化與懸液制備,以及實(shí)驗(yàn)過(guò)程中潛在的那些“坑”。
目前,單細(xì)胞測(cè)序的主要應(yīng)用領(lǐng)域?yàn)槿祟愥t(yī)學(xué)、神經(jīng)生物學(xué)、遺傳生殖、干細(xì)胞等研究領(lǐng)域,涉及到的主要樣品類型十分廣泛,但根據(jù)其來(lái)源,可分為如下幾個(gè)大類:1)腫瘤組織,如肝癌、胃癌、乳腺癌等;2)實(shí)體組織來(lái)源的原代分離細(xì)胞,如腦神經(jīng)元、腸道組織來(lái)源的上皮及干性細(xì)胞等;3)血液來(lái)源的某些細(xì)胞亞群(一般可以通過(guò)不同biomarker進(jìn)行FACS分選),如通過(guò)5色標(biāo)記的造血干細(xì)胞群體;4)干細(xì)胞誘導(dǎo)分化/重編程相關(guān)的細(xì)胞樣品。
如何根據(jù)自己課題的方案設(shè)計(jì)及樣品類型,選擇合適的單細(xì)胞制備方法,是事關(guān)成敗的第一要素?。ㄉ欧治龅耐瑢W(xué)先冷靜一下,沒(méi)說(shuō)你們不重要,畢竟好的樣品通過(guò)好的測(cè)序技術(shù)得到好的RAW DATA才能發(fā)揮你們的生信優(yōu)勢(shì)對(duì)不?。?/span>CNS文章里的方法學(xué),寫(xiě)的都很(bu)經(jīng) (xi) 典(zhi),看了之后還是一頭霧水。質(zhì)量濃度單位還是活性濃度單位?That is a question.
因此烈冰的實(shí)驗(yàn)團(tuán)隊(duì)決定自己動(dòng)手做一批動(dòng)物實(shí)驗(yàn),摸索并優(yōu)化出一套更適用的單細(xì)胞懸液制備方案。
l 實(shí)驗(yàn)?zāi)康模罕容^不同類型膠原酶消化針對(duì)不同類型組織的消化效果,摸索出適用于小鼠不同組織器官(如心、肝、脾、肺、腎和腦)的消化條件。
l 實(shí)驗(yàn)材料:剪刀、鑷子等器械需提前滅菌處理,RPMI-1640,FBS,D-Hanks`緩沖液(也可以換成含有Ca2+的HBBS)。膠原酶I/II/IV/V(具體類型及對(duì)應(yīng)貨號(hào)如下圖)。
l 實(shí)驗(yàn)方法:以肝臟、心臟為例,進(jìn)行演示,詳細(xì)流程及注釋事項(xiàng)如下圖所示。
注釋事項(xiàng):
① 解剖小鼠,取其具體靶器官時(shí),一般采取斷頸的方式,優(yōu)勢(shì)是處理快速、方法通用,但會(huì)引起體內(nèi)局部(尤其是胸腔)內(nèi)凝血,對(duì)心臟、主動(dòng)脈和肺等組織有一定影響;解剖過(guò)程,務(wù)必快速準(zhǔn)確,盡量減少細(xì)胞活性的損失;
② 沖洗過(guò)程,一般采用預(yù)冷的生理鹽水/PBS/D-Hanks`液/RPMI-1640等液體。此步驟注意兩點(diǎn):預(yù)冷+維持細(xì)胞活性的“液體”。一般情況下,建議RPMI-1640添加FBS至10%終體積(其實(shí)就是完全培養(yǎng)液)。也有老師用終濃度1-5%的BSA,其實(shí)作用都是為了提高細(xì)胞懸液制備過(guò)程中的細(xì)胞活性。
③ 剪碎過(guò)程,注意兩點(diǎn):快速+越小越碎越好??梢詼?zhǔn)備一次性的平皿,提前注入5-10 ml預(yù)冷的完全培養(yǎng)液,在預(yù)冷環(huán)境中剪碎組織。
④ 膠原酶消化,這一步注意事項(xiàng)較多。首先,明確適用于該組織的膠原酶,詳細(xì)情況見(jiàn)上面表格;一般情況下,IV型最通用,但特殊類型的組織用單一類型的酶效果更好;另外,根據(jù)研究目的,如果樣品所處微環(huán)境組織類型復(fù)雜,可以配成混合型的膠原酶,如II+IV型;第二,使用終濃度,我們整理了20+的CNS文章,發(fā)現(xiàn)有作者用質(zhì)量濃度mg/ml,也有的用活性單位濃度UI/ml,考慮到各公司貨品單位質(zhì)量對(duì)應(yīng)的活性不同,建議以活性單位濃度UI/ml為基準(zhǔn)。大多數(shù)的II或IV型膠原酶的使用濃度為100-200 UI/ml。最后,注意消化時(shí)間。一般情況下,膠原酶在37℃條件下活性最強(qiáng),消化時(shí)間為20-30 min;也有文章在處理腫瘤組織時(shí),消化4 h甚至過(guò)夜。不敢多想,深表懷疑。另外,也有老師喜歡用4℃消化過(guò)夜的方式,細(xì)胞數(shù)量和活性也都還不錯(cuò),可以嘗試,但可能不會(huì)通用于所有類型的組織。
⑤ 終止酶的消化,一般來(lái)說(shuō)都是加入血清的。但是,由于膠原酶本身不受血清影響,因此,只能采用離心—棄上清—加培養(yǎng)液重懸的“素質(zhì)三連”來(lái)洗去殘留的膠原酶。至于細(xì)胞碎片,這一步基本上都是通過(guò)低轉(zhuǎn)速短時(shí)間離心的方式進(jìn)行的,基本上300 g,5 min即可。既保證活細(xì)胞離心收集,又保證細(xì)胞碎片懸浮在上清中被棄掉。如果,老式離心機(jī)只能調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)速(rpm),沒(méi)有g(shù)這一選項(xiàng)的話,一般情況下是1000-1500 rpm。
⑥ 紅細(xì)胞裂解,這一步其實(shí)很糾結(jié)。先說(shuō)結(jié)論,該裂還是要裂的,不過(guò)盡量在初步分離細(xì)胞的時(shí)候把紅細(xì)胞去除干凈。不過(guò),像心臟和肝臟這樣的組織,本身紅細(xì)胞含量就超級(jí)高,裂紅在所難免。至于為什么糾結(jié),因?yàn)橛行┘?xì)胞類型被裂紅試劑處理后,會(huì)發(fā)生聚集并收縮在一團(tuán),用移液器輕微的吹打不容易將其分開(kāi),會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)的單細(xì)胞得率。
⑦ 最終,在檢測(cè)細(xì)胞活性/數(shù)量的時(shí)候,再啰嗦幾句。以本人十幾年的實(shí)驗(yàn)經(jīng)驗(yàn)(暴露年齡了),要么走經(jīng)典路線,光學(xué)顯微鏡+細(xì)胞計(jì)數(shù)板+臺(tái)盼藍(lán);要么走高科技路線,活/死細(xì)胞熒光染料染色后全自動(dòng)計(jì)數(shù)儀操作。這里不建議用臺(tái)盼藍(lán)染色,再全自動(dòng)計(jì)數(shù)的儀器,貴不貴不是最重要的,關(guān)鍵是不準(zhǔn)確,且批次間可重復(fù)性太低,低到你崩潰。明明鏡下觀察活性相當(dāng)客觀,為何全自動(dòng)說(shuō)細(xì)胞都掛了呢,不思其解。問(wèn)了周圍的小伙伴,以及銷售器材的一些朋友,確實(shí)也有不少人碰到過(guò)這一情況。
最后,給大家提一些單細(xì)胞懸液制備的注意事項(xiàng):
1) 針對(duì)具體組織類型選對(duì)酶,以及使用濃度;多種類型組織共存,可配置混合型酶反應(yīng)液;提前摸索活性濃度;
2) 酶干粉配置母液時(shí)要含有Ca2+離子才能激活活性;
3) 需要預(yù)冷的,需要室溫的,或者需要37℃的,都提前準(zhǔn)備好。一般情況下,酶消化用37℃,其他分離過(guò)程用4℃減少活性損失(包括離心);
4) 組織剪的越小,分離效果越好;
5) 離心機(jī)最好是帶g的,300 g+5 min通用全程;不帶g的話,1000-1500rpm即可,轉(zhuǎn)速過(guò)高,細(xì)胞活性會(huì)受影響,碎片也越多。
6)說(shuō)了這么多,希望對(duì)大家的實(shí)驗(yàn)有幫助。如果還有其他實(shí)驗(yàn)技術(shù)疑問(wèn),可以關(guān)注我們的微信公眾號(hào)(烈冰生物),烈冰還會(huì)陸續(xù)分享更多關(guān)于單細(xì)胞測(cè)序的實(shí)驗(yàn)技術(shù)和數(shù)據(jù)分析技巧。
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